一．開(kāi)機(jī)程序
 

  1．檢查穩(wěn)壓器電源，打開(kāi)電源，穩(wěn)定5分鐘。

  2．打開(kāi)儲(chǔ)液箱，倒掉廢液, 

  并在廢液桶中加入400ml漂白水原液。打開(kāi)壓力閥，取出鞘液桶，將鞘液桶加至4/5滿(一般可用三蒸水，做分選必須用PBS或FACSFlow)，合上壓力閥。確實(shí)蓋緊桶蓋，檢查所有管路是否妥善安置。

  3．將FACSCalibur開(kāi)關(guān)打開(kāi)，此時(shí)儀器功能控制鈕的顯示應(yīng)是STANDBY，預(yù)熱5－10分鐘。排出過(guò)濾器內(nèi)的氣泡。

  4．如果需要打印，打開(kāi)打印機(jī)電源。

  5．打開(kāi)電腦,等待屏幕顯示出標(biāo)準(zhǔn)的蘋(píng)果標(biāo)志。

  6．執(zhí)行儀器PRIME功能一次，以排除Flow cell中的氣泡。

  7．分析樣品時(shí)，先用FACAFlow 或PBS進(jìn)行HIGH RUN約2分鐘。

做過(guò)分選后，每次開(kāi)機(jī)后需沖洗管道：向分選裝置上裝上兩個(gè)50ml離心管，不接通濃縮系統(tǒng)，摁下右下角白色按鈕開(kāi)始沖洗。待自動(dòng)停止
后接通濃縮裝置，同上法沖洗一次。
 

二．預(yù)設(shè)獲取模式文件(Acquisition Template Files)
 

  1．從蘋(píng)果標(biāo)志中選擇CELLQuest見(jiàn)一個(gè)新視窗，可利用此視窗編輯一個(gè)獲取模式文件。

  2．選取屏幕左列繪圖工具中的Dot plot，繪出一個(gè)或多個(gè)Dot Plots(點(diǎn)圖)。從Dot Plot對(duì)話框中選取Acquisition作為圖形資料來(lái)源，并確定適當(dāng)?shù)膞軸和y軸參數(shù)。

  3．選取屏幕左列繪圖工具中的Histogram，同上法可繪出Histogram(直方圖)。

  4．將此視窗命名后儲(chǔ)存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest Folder \EXP文件夾中，下次進(jìn)行相同實(shí)驗(yàn)時(shí)可直接調(diào)用。

本計(jì)算機(jī)中已設(shè)定兩個(gè)模式文件：ACQ和EXP，儲(chǔ)存于FACStation G3\BD Applications \CELLQuest  \EXP文件夾中，ACQ用于細(xì)胞DNA檢測(cè)，EXP用于細(xì)胞表面標(biāo)志分析。

 
 三．用CELLQuest進(jìn)行儀器的設(shè)定和調(diào)整

  1．從蘋(píng)果畫(huà)面中選取CELLQuest，進(jìn)入CELLQuest后在File指令欄中打開(kāi)合適的獲取模式文件。

  2．從屏幕上方Acquire指令欄中，選取Connect to Cytometer(快捷鍵： ＋B)進(jìn)行電腦和儀器的連機(jī)。將出現(xiàn)的Acquisiton  Control對(duì)話框移至合適位置。

  3．從Cytometer指令欄中，開(kāi)啟Detectors/Amps、Threshold、Compensation、Status等四個(gè)對(duì)話框，并將它們移至屏幕右方，以便獲取數(shù)據(jù)時(shí)隨時(shí)調(diào)整獲取條件。也可以用 +1，2，3，4獲得此四個(gè)對(duì)話框。

  4．在Detectors/Amps對(duì)話框中，先為每個(gè)參數(shù)選擇適當(dāng)?shù)谋对瞿Ｊ?amplifier mode)：線性模式Lin或?qū)?shù)模式Log。一般進(jìn)行細(xì)胞表面抗原分析如分析外周血的淋巴細(xì)胞亞群時(shí)，F(xiàn)SC和SSC多以線性模式Lin測(cè)量，且DDM Param選擇FL2，而FL1,  FL2與FL3則以對(duì)數(shù)模式Log測(cè)量；分析細(xì)胞DNA含量時(shí)，F(xiàn)SC，SSC，F(xiàn)L1，F(xiàn)L2，F(xiàn)L3皆以Lin進(jìn)行測(cè)量，且DDM Param選擇FL2；分析血小板表型時(shí)，F(xiàn)SC，SSC，F(xiàn)L1，F(xiàn)L2，F(xiàn)L3等均以Log進(jìn)行測(cè)量。

  5．放上待檢測(cè)的樣品，將流式細(xì)胞儀設(shè)定于RUN，流速可在HIGH 或LOW上。

  6．在Acquisiton 

  Control對(duì)話框中，選取Acquire，開(kāi)始獲取細(xì)胞。在以下的儀器調(diào)整過(guò)程中隨時(shí)選取Pause，Restart以觀察調(diào)整效果。未*調(diào)整好之前不要去掉SETUP前的“?”。

  7．在Detectors/Amps對(duì)話框中，調(diào)整FSC和SSC探測(cè)器中的信號(hào)倍增度：PMT voltages(粗調(diào))與Amp Gains(細(xì)調(diào))，使樣品信號(hào)出現(xiàn)在FSC-SSC點(diǎn)圖內(nèi),且三群細(xì)胞合理分布。

  8．在Threshold 

  對(duì)話框中選擇適當(dāng)?shù)膮?shù)設(shè)定Threshold，并調(diào)整Threshold的高低，以減少噪音信號(hào)(細(xì)胞碎片)。一般做細(xì)胞表型時(shí)用FSC－H而做DNA時(shí)用FL2－H。Threshold并不影響檢測(cè)器對(duì)信號(hào)的獲取，但可改善畫(huà)面質(zhì)量。

  9．從屏幕左列繪圖工具中選取Region(區(qū)域)，并在靶細(xì)胞周圍設(shè)定區(qū)域線，即通常所說(shuō)的門。圈定合適的細(xì)胞群可使儀器調(diào)整更為容易。

  10．Detectors/Amps對(duì)話框中，調(diào)整熒光檢測(cè)器(FL1, FL2, FL3, FL4等)的倍增程度。根據(jù)所用的熒光陰性對(duì)照樣品調(diào)整細(xì)胞群，使之分布在正確的區(qū)域內(nèi)。

  11．在Compensation對(duì)話框中，根據(jù)所用的調(diào)補(bǔ)償用標(biāo)準(zhǔn)熒光樣品調(diào)整雙色(或多色)熒光染色所需的熒光補(bǔ)償。比如應(yīng)該為FL1+ FL2- 

  的細(xì)胞群卻分布在FL1＋ FL2＋區(qū)域內(nèi)，則需調(diào)大FL2－？％FL1中的“？”，并從FL1-FL2點(diǎn)圖中觀察新的調(diào)整是否恰當(dāng)

  12．在Status對(duì)話框中可見(jiàn)：Laser Power:正常值—Run/Ready為14.7mW，Standby為5mW；Laser current:正常值為6Amps左右。

  13．調(diào)整好的儀器設(shè)定可在Instrument Settings對(duì)話框中儲(chǔ)存，下次進(jìn)行相同實(shí)驗(yàn)時(shí)可調(diào)出使用，屆時(shí)只需微調(diào)即可。

 本計(jì)算機(jī)中已有三個(gè)名叫儲(chǔ)存于FACStation G3 \BD Applications \CELLQuest Folder\IMM-InstrSettings及FACStation G3 \BD Files \Instrument Settings Files\CalibFile和Mast-Cell-Set的參數(shù)文件，前二者可用于分析人白細(xì)胞，后者用于分析小鼠肥大細(xì)胞。